豬的白細胞介素10ELISA試劑盒Porcine IL- 10 ELISA KIT - ELISA試劑盒 - 細胞凍存液|胎牛血清|細胞株|細胞培養基|ELISA試劑盒|ECL發光液|國產血清|澳洲血清|完全培養基-上海尊龍凱時生物科技有限公司

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豬的白細胞介素10ELISA試劑盒Porcine IL- 10 ELISA KIT
貨號 :HP-03
價格 :¥3400.00/2120.00.00
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白細胞介素10定量分析酶聯免疫檢測試劑盒

 

本試劑盒僅供科研使用 。用於體外定量檢測豬血清 、血漿或細胞培養上清液中的IL-10濃度 。使用前請仔細閱讀說明書並檢查試劑組分是否完整, 如有產品包裝破損或質量投拆 ,請在收到貨一個月之內聯係尊龍凱時 。

 

IL-10簡介 :

IL-10是個多效性的因子 ,能夠對多種細胞起作用 ,主要表現為免疫抑製和免疫刺激兩方麵的作用 ,特別是在調節淋巴係和髓係的細胞功能方麵扮演重要的作用 。IL-10 也具有單核細胞/巨噬細胞依賴 、抗原刺激引起的的PBMNC  NK 細胞合成其它細胞因子的抑製作用 。巨噬細胞膜介導的共刺激引起的T細胞和NK細胞活化後的產物及功能也可被IL-10所抑製 。IL-10是單核細胞/巨噬細胞功能的強有力的調節物 。IL-10作為細胞介導的免疫反應的抑製物 ,能夠抑製像前列腺素E2 、TNF-α 、IL-1 、IL-10 IL-8等許多引起炎症的細胞因子 。IL-10 能夠促進可溶性TNF受體的釋放和ICAM-1和B7在細胞表麵的表達 。IL-10還參與B細胞 、柱狀細胞及胸腺細胞的增殖和分化的調控 。在許多與寄生蟲感染的報道中 ,IL-10表達也會增加 ,如曼森氏血吸蟲感染 、利什曼原蟲感染 、弓形蟲感染 、錐蟲感染等 。分枝杆菌的感染如麻風分枝杆菌 、結核杆菌 、 鳥分枝杆菌等的感染也會引起IL-10的表達升高 。

IL-10DNA序列和氨基酸序列上高度同源 ,其DNA序列中一個開放的基因框與艾伯斯坦-巴爾病毒基因組上基因框BCRF1高度同源 ,這可能在病毒感染中扮演重要角色的原因 。在許多與寄生蟲感染的報道中 ,IL-10表達也會增加 ,如曼森氏血吸蟲感染 、利什曼原蟲感染、弓形蟲感染 、錐蟲感染等 。分枝杆菌的感染如麻風分枝杆菌 、結核杆菌 、 鳥分枝杆菌等的感染也會引起IL-10的表達升高 。

 

檢測原理:

本試劑盒采用雙抗體夾心ELISA法檢測樣本中IL-10 的濃度 。IL-10 捕獲抗體已預包被於酶標板上 ,當加入標本或參考品時 ,其中的IL-10 會與捕獲抗體結合 ,其它遊離的成分通過洗滌的過程被除去 。當加入生物素化的抗豬IL-10 抗體後 ,抗豬IL-10 抗體與IL-10 接合 ,形成夾心的免疫複合物 ,其它遊離的成分通過洗滌的過程被除去 。隨後加入辣根過氧化物酶標記的親合素 。生物素與親合素特異性結合 ,親合素連接的酶就會與夾心的免疫複合物連接起來 ;其它遊離的成分通過洗滌的過程被除去 。最後加入顯色劑 ,若樣本中存在IL-10 將會形成免疫複合物 ,辣根過氧化物酶會催化無色的顯色劑氧化成藍色物質 ,在加入終止液後呈黃色 。通過酶標儀檢測 ,讀其450nm處的OD值 ,IL-10 濃度與OD450值之間呈正比 ,通過參考品繪製標準曲線,對照未知樣本中OD值 ,即可算出標本中IL-10 濃度 。

 

IL-10定量分析酶聯免疫檢測試劑盒組成:

組分

規格(96T/48T)

豬IL-10預包被板

12條/6

樣本分析緩衝液

5ml/3ml

標準品稀釋液

10ml/5ml

豬IL-10標準品

2支/1支(凍幹)

豬IL-10生物素化抗體

10ml/5ml

親和素連接的HRP酶

10ml/5ml

濃縮洗滌液 20×

30ml/15ml

TMB底物

10ml/5ml

中止液

5ml/3ml

封板膠紙

3/2

說明書

1

標本收集:

1.標本的收集請按下列流程進行操作 ;

A.細胞上清標本離心去除懸浮物後即可 ;

B.血清標本應是自然凝固後 ,取上清 ,避免在冰箱中凝固血液 ;

C.血漿標本 ,推薦用EDTA的方法收集 ;

D.若待測樣本不能及時檢測 ,標本收集後請分裝 ,凍存於-20℃ ,避免反複凍融 。

2.血清標本不應添加任何防腐劑或抗凝劑 ;

3.標本應清澈透明 ,檢測前樣本中如有懸浮物應通過離心去除 。

4.請勿使用溶血 ,高血脂或汙染的標本檢測 ,否則結果將不準確 。

注 :豬血清或血漿樣本請用樣本分析緩衝液做倍比稀釋後再檢測 。

 

注意事項:

1.試劑盒請保存在28℃ 。

2.濃縮洗滌液因在低溫下可能有結晶 ,請水浴加熱使結晶完全溶解後再配製工作液 。

3.標準品複溶加樣後 ,剩餘部份請丟棄 。

4.底物請勿接觸氧化劑和金屬 。

5.加樣時 ,請及時更換槍頭 ,避免交叉汙染 。

6.嚴禁混用不同批號的試劑盒組份 。

7.充分混勻對保證反應結果的準性很重要 ,在加液後請輕輕叩擊邊緣以保證混勻 。

8.室溫反應 ,請嚴格控製在25~28℃ 。

9.洗滌過程是至關重要的 ,洗滌不充分會使精確度下降並導致結果誤差較大 。

10.試驗中標準品和樣本檢測時建議作雙複孔 。

11.加樣過程中避免氣泡的產生 。

12.血清和血漿標本的檢測時 ,檢測抗體的孵育時間應適當延長 。

 

檢測前準備工作: 

1.試劑盒自冰箱中取出後應置室溫(25-28℃)平衡20分鍾 ;每次檢測後剩餘試劑請及時於2~8℃保存 。

2.將濃縮洗滌液用雙蒸水或去離子水稀釋(1份加19份水) 。

3.如有5X準品稀釋液,請按所需量用雙蒸水或去離子水稀釋(1份加4水) 。

4.標準品: 按標簽複溶體積加入標準品稀釋液複溶使IL-10終濃度達到1500pg/ml ,室溫反應 ,請嚴格控製在25~28℃ ,靜置10~15分鍾後輕輕混懸(建議抽吸幾次)待徹底溶解 ,用標準品稀釋液倍比梯度稀釋後依次加入檢測孔中 。(標準曲線取七個點 ,最高濃度為1500 pg/ml,標準品稀釋液直接加入作為0濃度.)

圖片2.png 

洗滌方法:

自動洗板機或豬工洗板 :每孔洗滌液為300ul ,注入與吸出間隔15-30秒 。洗板5次 。最後一次洗板完成後將板倒扣著在厚吸水紙上用力拍幹 。

 

實驗過程需自備的材料 :

1.不同規格的加樣槍及相應的槍頭 ;   

2.酶標儀 ;

3.自動洗板機 ;                     

4.去離子水或雙蒸水 ;

 

操作步驟:

1.通過計算並確定一次性實驗所需的板條數 ,取出所需板條放置在框架內 ,暫時用不到板條請放回鋁箔袋密封 ,保存於4℃ 。

2.建議設置本底較正孔 ,即空白孔,設置方法為該孔隻加TMB顯色液和中止液 。每次實驗均需做標準品對照並畫出標準曲線 。

3.分別將標本或不同濃度標準品(100ul/孔)加入相應孔中 ,用封板膠紙封住反應孔 ,室溫(25-28℃)孵育120分鍾 。對於血清或血漿標本 ,請加入50 ul樣本分析緩衝液後加50 ul標本 ,如稀釋量大 ,請將樣本與樣本分析緩衝液等量加入 ,不足部分用標準品稀釋液補充至100ul 。    

4.洗板5次 ,且最後一次置厚吸水紙上拍幹 。

5.加入生物素化抗體工作液(100ul/) 。用封板膠紙封住反應孔 ,室溫(25-28℃)孵育60分鍾 。   

6.洗板5次 ,且最後一次置厚吸水紙上拍幹 。

7.加入親和素連接的HRP酶工作液(100ul/) 。用封板膠紙封住反應孔 ,避光室溫(25-28℃)孵育20分鍾 。

8.洗板5次 ,且最後一次置厚吸水紙上拍幹 。

9.加入顯色劑TMB100ul/孔 ,避光室溫(25-28℃)孵育20分鍾 。

10.加入中止液50ul/孔,混勻後即刻測量OD450值 。

 

結果判斷:

1.複孔的值在20%的差異範圍內結果才有效 ,複孔的值平均後可作為測量值 。

2.每個標準品或標本的OD值應減去本底校正孔的OD值 。

3.手工繪製標準曲線 。以標準品濃度作橫坐標 ,OD值作縱坐標 ,以平滑線連接各標準品的坐標點 。通過標本的OD值可在標準曲線上查出其濃度 。

4.若標本OD值高於標準曲線上限 ,應適當稀釋後重測 ,計算濃度時應乘以稀釋倍數 。

典型數值和參考曲線

濃度pg/ml

典型OD1

典型OD2

OD平均值

0

0.114

0.094

0.134

46.875

0.263

0.256

0.27

93.75

0.391

0.385

0.397

187.5

0.557

0.527

0.587

375

0.975

0.954

0.996

750

1.478

1.446

1.51

1500

2.374

2.243

2.505

IL-10參考標準曲線

圖片1.png 

注意 :本圖僅供參考 ,應以同次試驗標準品所繪標準曲線計算標本含量 。

 

靈敏度 ,特異性和重複性:

1.靈敏度 :多次重複結果表明 ,最小檢出量為34.5pg/ml 。

2.特異性 :與人 、小鼠 、大鼠的IL-10及豬的IFN-γ均無交叉反應性 。

3.重複性 :板內 ,板間變異係數均<10%.

 

參考文獻:

1. Sennikov, S.V. et al. (2002) Cytokine 17:221.

2. Kotenko, S.V. et al. (1997) EMBO J. 16:5894.

3.. Gruenberg, B.H. et al. (2001) Genes Immun. 2:329.

4. Rich, B.E. and T.S. Kupper (2001) Curr. Biol. 11:R531.

5. Fickenscher, H. et. al. (2002) Trends Immunol. 23:89.

6. Rea, D. et al. (2000) Blood 95:3162.

7. Olikowsky, T. et al. (1997) Immunology 91:104.

8. Iwasaki, A. and B.L. Kelsall (1999) J. Exp. Med. 190:229.

9. Moore, K.W. et al. (2001) Annu. Rev. Immunol. 19:683


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