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人的正五聚蛋白-3ELISA試劑盒Human Pentraxin 3/TSG-14 ELISA KIT
貨號 :HH-115
價格 :¥3800.00
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正五聚蛋白-3 (Pentraxin 3)定量分析

酶聯免疫檢測試劑盒

本試劑盒僅供科研使用 。用於體外定量檢測人血清 、血漿或細胞培養上清液中的正五聚蛋白-3度 。使用前請仔細閱讀說明書並檢查試劑組分是否完整 。如有產品包裝破損或質量投拆 ,請在收到貨一個月之內聯係尊龍凱時 。

 

正五聚蛋白-3簡介 :

正五聚蛋白-3(PTX3) ,也叫腫瘤壞死因子誘導蛋白5或腫瘤壞死因子刺激基因14(TSG-14) ,屬於正五超家族蛋白中的一員 ,人的正五聚蛋白-3是一個45kDa的糖蛋白 。 巨噬細胞 ,中性粒細胞 ,骨髓來源的樹突狀細胞 ,卵巢粒細胞 ,內皮細胞 ,成纖維細胞 ,脂肪細胞 ,腎小球膜係細胞 ,滑液細胞 ,平滑肌細胞 ,泡狀上皮細胞及神經膠質細胞等細胞均可產生正五聚蛋白-3 。

正五聚蛋白-3是一個急性反應時相蛋白 ,人和小鼠在炎症和感染狀態下 ,血清中的正五聚蛋白-3迅速上升 。在動脈粥樣硬化患者的血液中 ,正五聚蛋白-3會大量出現 ,在心肌梗死患者血液中 ,正五聚蛋白-3含量會明顯升高 。正五聚蛋白-3在免疫反應的調控中有雙重調節作用 ,結合不能移動的正五聚蛋白-3通過C末端的正五聚蛋白結構域與補體組分C1q結合 ,觸發經典的補體反應 。另一方麵 ,自由移動的正五聚蛋白-3抑製經典的補體反應 。正五聚蛋白-3可能俱有像調理素類似的功能 ,通過與特定的病毒 ,真菌及細菌成分相互作用 ,保護機體免受感染 。最後 ,正五聚蛋白-3可能在血管生成的過程中起重要作用 ,正五聚蛋白-3N端能與堿性成纖維生長因子結合 ,從而抑製堿性成纖維生長因子依賴型的血管再生 。

 

檢測原理:

本試劑盒采用雙抗體夾心ELISA法檢測樣本中PENTRAXIN 3 的濃度 。PENTRAXIN 3 捕獲抗體已預包被於酶標板上 ,當加入標本或參考品時 ,其中的PENTRAXIN 3 會與捕獲抗體結合 ,其它遊離的成分通過洗滌的過程被除去 。當加入生物素化的抗人PENTRAXIN 3 抗體後 ,抗人PENTRAXIN 3 抗體與PENTRAXIN 3 接合 ,形成夾心的免疫複合物 ,其它遊離的成分通過洗滌的過程被除去 。隨後加入辣根過氧化物酶標記的親合素。生物素與親合素特異性結合 ,親合素連接的酶就會與夾心的免疫複合物連接起來 ;其它遊離的成分通過洗滌的過程被除去 。最後加入顯色劑 ,若樣本中存在PENTRAXIN 3 將會形成免疫複合物 ,辣根過氧化物酶會催化無色的顯色劑氧化成藍色物質 ,在加入終止液後呈黃色。通過酶標儀檢測 ,讀其450nm處的OD值 ,PENTRAXIN 3 濃度與OD450值之間呈正比 ,通過參考品繪製標準曲線 ,對照未知樣本中OD值 ,即可算出標本中PENTRAXIN 3 濃度 。

 

PENTRAXIN 3量分析酶聯免疫檢測試劑盒組成:

組分

規格(96T/48T)

Pentraxin 3預包被板

12條/6

樣本分析緩衝液

5ml/3ml

標準品稀釋液

10ml/5ml

Pentraxin 3標準品

2/1支(凍幹)

Pentraxin 3生物素化抗體

10ml/5ml

親和素連接的HRP酶

10ml/5ml

濃縮洗滌液 20×

30ml/15ml

TMB底物

10ml/5ml

中止液

5ml/3ml

封板膠紙

3/2

說明書

1

標本收集:

1.標本的收集請按下列流程進行操作 ;

A.細胞上清標本離心去除懸浮物後即可;

B.血清標本應是自然凝固後 ,取上清 ,避免在冰箱中凝固血液 ;

C.血漿標本 ,推薦用EDTA的方法收集

D.若待測樣本不能及時檢測 ,標本收集後請分裝 ,凍存於-20℃ ,避免反複凍融 。

2.血清標本不應添加任何防腐劑或抗凝劑 ;

3.標本應清澈透明 ,檢測前樣本中如有懸浮物應通過離心去除 。

4.請勿使用溶血 ,高血脂或汙染的標本檢測 ,否則結果將不準確 。

注 :人血清或血漿樣本請用樣本分析緩衝液做倍比稀釋後再檢測 。

 

注意事項:

1.試劑盒請保存在28℃ 。

2.濃縮洗滌液因在低溫下可能有結晶 ,請水浴加熱使結晶完全溶解後再配製工作液 。

3.標準品複溶加樣後 ,剩餘部份請丟棄 。

4.底物請勿接觸氧化劑和金屬 。

5.加樣時 ,請及時更換槍頭 ,避免交叉汙染 。

6.嚴禁混用不同批號的試劑盒組份 。

7.充分混勻對保證反應結果的準性很重要 ,在加液後請輕輕叩擊邊緣以保證混勻 。

8.室溫反應 ,請嚴格控製在25~28℃ 。

9.洗滌過程是至關重要的 ,洗滌不充分會使精確度下降並導致結果誤差較大 。

10.試驗中標準品和樣本檢測時建議作雙複孔 。

11.加樣過程中避免氣泡的產生 。

12.血清和血漿標本的檢測時 ,檢測抗體的孵育時間應適當延長 。

 

檢測前準備工作:

1.試劑盒自冰箱中取出後應置室溫(25-28℃)平衡20分鍾 ;每次檢測後剩餘試劑請及時於2~8℃保存 。

2.將濃縮洗滌液用雙蒸水或去離子水稀釋(1份加19份水) 。

3. 如有5×標準品稀釋液用雙蒸水或去離子水稀釋(1份加4份水) 。

4.標準品:按標簽複溶體積用標準品稀釋液複溶使PENTRAXIN 3終濃度達到14ng/ml ,室溫反應 ,請嚴格控製在25~28℃ ,靜置15~20分鍾後輕輕混懸(建議抽吸幾次)待徹底溶解 ,用標準品稀釋液倍比梯度稀釋後依次加入檢測孔中 。(標準曲線取七個點 ,最高濃度為14 ng/ml,標準品稀釋液直接加入作為0濃度.)

圖片2.png 

洗滌方法:

自動洗板機或人工洗板 :每孔洗滌液為300ul ,注入與吸出間隔15-30秒 。最後一次洗板完成後將板倒扣著在厚吸水紙上用力拍幹 。

 

實驗過程需自備的材料 :

1.不同規格的加樣槍及相應的槍頭 ;   

2.酶標儀 ;

3.自動洗板機 ;                    

4.去離子水或雙蒸水 ;

 

操作步驟:

1.通過計算並確定一次性實驗所需的板條數 ,取出所需板條放置在框架內 ,暫時用不到板條請放回鋁箔袋密封 ,保存於4℃ 。

2.建議設置本底較正孔 ,即空白孔,設置方法為該孔隻加TMB顯色液和中止液 。每次實驗均需做標準品對照並畫出標準曲線 。

3.分別將標本或不同濃度標準品(100ul/孔)加入相應孔中 ,用封板膠紙封住反應孔 ,室溫(25-28℃)孵育120分鍾 。對於血清或血漿標本 ,請加入50 ul樣本分析緩衝液後加50 ul標本 ,如稀釋量大 ,請將樣本與樣本分析緩衝液等量加入 ,不足部分用標準品稀釋液補充至100ul 。      

4.洗板5次 ,且最後一次置厚吸水紙上拍幹 。

5.加入生物素化抗體工作液(100ul/) 。用封板膠紙封住反應孔 ,室溫(25-28℃)孵育60分鍾 。   

6.洗板5次 ,且最後一次置厚吸水紙上拍幹 。

7.加入親和素連接的HRP酶(100ul/) 。用封板膠紙封住反應孔 ,避光室溫(25-28℃)孵育20分鍾 。

8.洗板5次 ,且最後一次置厚吸水紙上拍幹 。

9.加入顯色劑TMB100ul/孔 ,避光室溫(25-28℃)孵育20分鍾 。

10.加入中止液50ul/孔,混勻後即刻測量OD450值 。

 

結果判斷:

1.複孔的值在20%的差異範圍內結果才有效 ,複孔的值平均後可作為測量值 。

2.每個標準品或標本的OD值應減去本底校正孔的OD值 。

3.手工繪製標準曲線 。以標準品濃度作橫坐標 ,OD值作縱坐標 ,以平滑線連接各標準品的坐標點 。通過標本的OD值可在標準曲線上查出其濃度 。

4.若標本OD值高於標準曲線上限 ,應適當稀釋後重測 ,計算濃度時應乘以稀釋倍數 。

典型數值和參考曲線

濃度ng/ml

典型OD1

典型OD2

OD平均值

0

0.099

0.091

0.095

0.4375

0.266

0.251

0.2585

0.875

0.449

0.431

0.44

1.75

0.676

0.648

0.662

3.5

1.015

0.957

0.986

7

1.538

1.454

1.496

14

2.221

2.106

2.1635

PENTRAXIN 3參考標準曲線

圖片1.png 

注意 :本圖僅供參考 ,應以同次試驗標準品所繪標準曲線計算標本含量 。

 

靈敏度 ,特異性和重複性:

1.靈敏度 :多次重複結果表明 ,最小檢出量為84pg/ml 。

2.特異性 :與人的Pentraxin 2 、CRP  無交叉反應性 ,與小鼠的Pentraxin 2 、Pentraxin 3無交叉反應性 。

3.重複性 :板內 ,板間變異係數均<10%.

 

參考文獻:

1. Camozzi, M. et al. (2005) Arteriosescler. Thromb. Vasc. Biol. 25:1837.

2. Introna, M. et al. (1996) Blood 87:1862.

3. Baruah, P. et al. (2006) J. Leukoc. Biol. 80:87.

4. Garlanda, C. et al. (2002) Nature 420:182.

5. Jaillo n, S. et al. (2007) J. Exp. Med. 204:793.

6. Wisniewski, H. and J. Vilcek (2004) Cytokine Growth Factor Rev. 15:129.


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