大鼠腫瘤壞死因子定量分析酶聯免疫檢測試劑盒
本試劑盒僅供科研使用 。用於體外定量檢測大鼠血清 、血漿或細胞培養上清液中的TNF-α濃度 。使用前請仔細閱讀說明書並檢查試劑組分是否完整,如有產品包裝破損或質量投拆 ,請在收到貨一個月之內聯係尊龍凱時 。
TNF-α簡介 :
腫瘤壞死因子(TNF-α)是由單核細胞和巨噬細胞產生的多肽類細胞因子 ,在炎症反應 、免疫係統的發展 、細胞程序性死亡和脂代謝中起重要的作用 。其功能主要是在免疫反應中是一個多功能的調節器甚至作為一個強烈的熱原性物質刺激中性粒細胞 ,改變血管內皮細胞的特性 ,調節其它組織的代謝活性 。TNF-α也可通過抑製脂蛋白脂肪酶的活性而導致惡液病 。愛潑斯坦病毒引起的細胞活化也可被TNF-α所抑製 。
巨噬細胞表麵的淋巴因子和肉毒素也可介導包括上皮細胞 、內皮細胞和腫瘤細胞等產生TNF-α 。據報道幹擾素能顯著提高TNF-α的分泌量 。
TNF-α在關節炎和其它組織的炎症的發病機理中起重要作用 。TNF-α也參與了包括哮喘 、克羅恩氏病 、類風濕性關節炎 、神經性疼痛 、肥胖症 、II型糖尿病 、自身免疫病和腫瘤等疾病的發生 。
檢測原理:
本試劑盒采用雙抗體夾心ELISA法檢測樣本中大鼠TNF-α的濃度 。大鼠TNF-α捕獲抗體已預包被於酶標板上 ,當加入標本或參考品時 ,其中的大鼠TNF-α會與捕獲抗體結合 ,其它遊離的成分通過洗滌的過程被除去 。當加入生物素化的抗大鼠TNF-α抗體後 ,抗大鼠TNF-α抗體與大鼠TNF-α接合 ,形成夾心的免疫複合物 ,其它遊離的成分通過洗滌的過程被除去 。隨後加入辣根過氧化物酶標記的親合素 。生物素與親合素特異性結合 ,親合素連接的酶就會與夾心的免疫複合物連接起來 ;其它遊離的成分通過洗滌的過程被除去 。最後加入顯色劑 ,若樣本中存在TNF-α將會形成免疫複合物 ,辣根過氧化物酶會催化無色的顯色劑氧化成藍色物質 ,在加入中止液後呈黃色 。通過酶標儀檢測 ,讀其450nm處的OD值 ,大鼠TNF-α濃度與OD450值之間呈正比 ,通過參考品繪製標準曲線 ,對照未知樣本中OD值 ,即可算出標本中TNF-α濃度 。
大鼠TNF-α定量分析酶聯免疫檢測試劑盒組成:
組分 | 規格(96T/48T) |
大鼠TNF-α預包被板 | 12條/6條 |
樣本分析緩衝液 | 5ml/3ml |
標準品稀釋液 | 10ml/5ml |
大鼠TNF-α標準品 | 2支/1支(凍幹) |
大鼠TNF-α生物素化抗體 | 10ml/5ml |
親和素連接的HRP酶 | 10ml/5ml |
濃縮洗滌液 20× | 30ml/15ml |
TMB底物 | 10ml/5ml |
中止液 | 5ml/3ml |
封板膠紙 | 3/2張 |
說明書 | 1份 |
標本收集:
1.標本的收集請按下列流程進行操作 ;
A.細胞上清標本離心去除懸浮物後即可 ;
B.血清標本應是自然凝固後 ,取上清 ,避免在冰箱中凝固血液 ;
C.血漿標本 ,推薦用EDTA的方法收集 ;
D.若待測樣本不能及時檢測 ,標本收集後請分裝 ,凍存於-20℃ ,避免反複凍融 。
2.血清標本不應添加任何防腐劑或抗凝劑 ;
3.標本應清澈透明 ,檢測前樣本中如有懸浮物應通過離心去除 。
4.請勿使用溶血 ,高血脂或汙染的標本檢測 ,否則結果將不準確 。
注 :大鼠血清或血漿樣本請用樣本分析緩衝液做倍比稀釋後再檢測 。
注意事項:
1.試劑盒請保存在2~8℃ 。
2.濃縮洗滌液因在低溫下可能有結晶 ,請水浴加熱使結晶完全溶解後再配製工作液 。
3.標準品複溶加樣後 ,剩餘部份請丟棄 。
4.底物請勿接觸氧化劑和金屬 。
5.加樣時 ,請及時更換槍頭 ,避免交叉汙染 。
6.嚴禁混用不同批號的試劑盒組份 。
7.充分混勻對保證反應結果的準性很重要 ,在加液後請輕輕叩擊邊緣以保證混勻 。
8.室溫反應 ,請嚴格控製在25~28℃ 。
9.洗滌過程是至關重要的 ,洗滌不充分會使精確度下降並導致結果誤差較大 。
10.試驗中標準品和樣本檢測時建議作雙複孔 。
11.加樣過程中避免氣泡的產生 。
12.血清和血漿標本的檢測時 ,檢測抗體的孵育時間應適當延長 。
檢測前準備工作:
1.試劑盒自冰箱中取出後應置室溫(25~28℃)平衡20分鍾 ;每次檢測後剩餘試劑請及時於2~8℃保存 。
2.將濃縮洗滌液用雙蒸水或去離子水稀釋(1份加19份水) 。
3.如有5X準品稀釋液 ,請按所需量用雙蒸水或去離子水稀釋(1份加4水) 。
4.標準品: 按標簽複溶體積加入標準品稀釋液複溶使TNF-α終濃度達到2000pg/ml ,室溫反應,請嚴格控製在25~28℃ ,靜置10~15分鍾後輕輕混懸(建議抽吸幾次)待徹底溶解 ,用標準品稀釋液倍比梯度稀釋後依次加入檢測孔中 。(標準曲線取七個點 ,最高濃度為2000 pg/ml,標準品稀釋液直接加入作為0濃度.)
洗滌方法:
自動洗板機或人工洗板 :每孔洗滌液為300ul ,注入與吸出間隔15-30秒 。洗板5次 。最後一次洗板完成後將板倒扣著在厚吸水紙上用力拍幹 。
實驗過程需自備的材料:
1.不同規格的加樣槍及相應的槍頭;
2.酶標儀 ;
3.自動洗板機 ;
4.去離子水或雙蒸水 ;
操作步驟:
1.通過計算並確定一次性實驗所需的板條數 ,取出所需板條放置在框架內 ,暫時用不到板條請放回鋁箔袋密封 ,保存於4℃ 。
2.建議設置本底較正孔 ,即空白孔,設置方法為該孔隻加TMB顯色液和中止液 。每次實驗均需做標準品對照並畫出標準曲線 。
3.分別將標本或不同濃度標準品(100ul/孔)加入相應孔中 ,用封板膠紙封住反應孔 ,室溫(25~28℃)孵育120分鍾 。對於血清或血漿標本 ,請加入50 ul樣本分析緩衝液後加50 ul標本 ,如稀釋量大 ,請將樣本與樣本分析緩衝液等量加入 ,不足部分用標準品稀釋液補充至100ul 。
4.洗板5次 ,且最後一次置厚吸水紙上拍幹 。
5.加入生物素化抗體工作液(100ul/孔) 。用封板膠紙封住反應孔 ,室溫(25~28℃)孵育60分鍾 。
6.洗板5次 ,且最後一次置厚吸水紙上拍幹 。
7.加入親和素連接的HRP酶工作液(100ul/孔) 。用封板膠紙封住反應孔 ,避光室溫(25~28℃)孵育20分鍾 。
8.洗板5次 ,且最後一次置厚吸水紙上拍幹 。
9.加入顯色劑TMB100ul/孔 ,避光室溫(25~28℃)孵育20分鍾 。
10.加入終止液50ul/孔,混勻後即刻測量OD450值 。
結果判斷:
1.複孔的值在20%的差異範圍內結果才有效 ,複孔的值平均後可作為測量值 。
2.每個標準品或標本的OD值應減去本底校正孔的OD值 。
3.手工繪製標準曲線 。以標準品濃度作橫坐標 ,OD值作縱坐標 ,以平滑線連接各標準品的坐標點 。通過標本的OD值可在標準曲線上查出其濃度 。
4.若標本OD值高於標準曲線上限 ,應適當稀釋後重測 ,計算濃度時應乘以稀釋倍數 。
典型數值和參考曲線
濃度pg/ml | 典型OD值1 | 典型OD值2 | OD平均值 |
0 | 0.0987 | 0.1079 | 0.1033 |
62.5 | 0.2648 | 0.2814 | 0.2731 |
125 | 0.4625 | 0.4947 | 0.4786 |
250 | 0.7184 | 0.7398 | 0.7291 |
500 | 1.0426 | 1.0636 | 1.0531 |
1000 | 1.4968 | 1.5166 | 1.5067 |
2000 | 2.0357 | 2.0565 | 2.0461 |
大鼠TNF-α參考標準曲線
注意 :本圖僅供參考 ,應以同次試驗標準品所繪標準曲線計算標本含量 。
靈敏度 ,特異性和重複性:
1.靈敏度 :多次重複結果表明 ,最小檢出量為26pg/ml 。
2.特異性 :與GDNF,IFN-γ,IL-1α,IL-1β,IL-2 ,IL-4 ,PDGF-BB,IL-10,human TNF-α, mouse TNF-α等沒有交叉反應 。
3.重複性 :板內 ,板間變異係數均<10%.
參考文獻:
1. Tumor Necrosis Factor: Structure, Function and Mechanism of Action, Aggarwal, B.B. and J. Vilcek eds. (1991) Marcel Dekker, Inc., New York.
2. Gearing, A.J.H. et al. (1994) Nature 370:555.
3. Tartaglia, L.A. and D.V. Goeddel (1992) Immunol. Today 13:151.
4. Olsson, K. et al. (1989) Eur. J. Haematol. 42:270.
5. Engelmann, H. et al. (1990) J. Biol. Chem. 265:1531